Glass Gel 中型预制胶(Tris-Gly) , 26孔, 4-20%

Bioss的GLASS gel 中型预制胶（Tris-Gly）是一款安全、快捷、高性能的预制聚丙烯酰胺凝胶，常用于PAGE和Western Blot检测。

产品特点：

采用自动化的灌胶生产技术，确保了产品质量的高稳定性和重复性。

采用玻璃胶板，有效减少蛋白非特异性吸附，使蛋白条带更为敏锐，清晰。

电泳时间短，使用超快电泳缓冲液，在220V电压下，电泳20min 即可完成。

胶夹打开极为轻松，只需用刀片在胶夹一侧轻轻划一下即可打开。

凝胶中不含SDS，可用于变性和非变性电泳。

兼容市场上主流的Mid电泳槽，如Bio-Rad, Invitrogen。

中型凝胶尺寸，更多上样孔数，便于分析蛋白样品。

提供多种浓度的均一胶和梯度胶（6%，8%，10%，12%，15%，4-15%，4-20%）。

也可以提供特殊浓度的定制服务。

注：使用荧光上样缓冲液处理过的样品，无需剥胶，无需经过染色脱色处理，即可直接在紫外灯或者LED灯下观察到蛋白条带。配合超快电泳缓冲液使用，可在半个小时内完成样品处理、电泳、拍照的全部过程，获得理想的电泳结果。

基本信息：

保存条件：2-8℃保存，有效期12个月。请勿置于0℃以下，否则会冻凝，产生气泡和裂纹导致报废。

常温运输，常温保存时应放置于阴凉处，避免温度剧烈变化和阳光直射。

产品规格（预制胶选择指导）：

使用说明：

非变性胶（Native-PAGE）

1.非变性胶的蛋白迁移率受到蛋白分子量、蛋白空间结构等多种因素影响，建议实验前进行预实验。

2.将GLASS gel 中型预制胶 Tris-Gly从包装袋中取出。

3.将预制胶固定在电泳槽中。

4.准备非变性电泳缓冲液：取 1000mL 1× Tris-Gly非变性电泳缓冲液。

5.内槽加满电泳液，外槽的电泳液最低 须加到1/3液面处，最高不可漫过胶板，再缓慢地将梳子拔出。

6.上样前请使用移液器吸取电泳缓冲液轻轻吹打加样孔，去除加样孔内残余的胶液。

7.上样：将非变性蛋白样品与 5× 非变性 Loading buffer 进行 4：1 混合均匀。注意枪头不要戳破凝胶，不要过度插入梳孔使胶板变形造成漏液。

8.电泳条件：180 V, 70 min，当溴酚蓝指示带电泳至胶板底部，或实验预定位置时，即可结束电泳。

9.电泳结束，取出凝胶。用刀在侧边硅胶处，沿着两片玻璃的缝隙切开封胶材料，即可打开玻璃板，取胶时，需在凝胶和玻璃条之间，沿着玻璃条划一刀，防止取胶时，发生粘连使胶破碎。（使用美工刀时请注意安全）

10.酸性蛋白（等电点pI<7）正常上样电泳即可。反之，碱性蛋白（等电点pI>7）带正电荷，需将电极插反（红插黑，黑插红），这时上样孔成为正极，样品向下电泳。

变性胶（SDS-PAGE）

1.请参考分离谱图选择合适浓度的预制胶，以帮助您进行更好的蛋白电泳条带分离。

2.将GLASS gel 中型预制胶 Tris-Gly从包装袋中取出。

3.将预制胶固定在电泳槽中。

4.准备电泳缓冲液：取 1000mL 1× Tris-Gly变性电泳缓冲液。

5.内槽加满电泳液，外槽的电泳液最低须加到1/3液面处，最高不可漫过胶板，再缓慢地将梳子拔出。

6.上样前请使用移液器吸取电泳缓冲液轻轻吹打加样孔，去除加样孔内残余的胶液。

7.上样：将蛋白样品与 5× 变性Loading buffer进行4：1混合均匀，加热处理。注意枪头不要戳破凝胶，不要过度插入梳孔使胶板变形造成漏液。

8.电泳条件：180 V, 70 min，当溴酚蓝指示带电泳至胶板底部，或实验预定位置时，即可结束电泳。

9.电泳结束，取出凝胶。用刀在侧边胶处，沿着两片玻璃的缝隙切开封胶材料，即可打开玻璃板，取凝胶时，需在凝胶和玻璃条之间，沿着玻璃条划一刀，防止取胶时，发生粘连使胶破碎。（使用美工刀时请注意安全）

拆胶建议：

1.先沿侧边胶处简单划一刀（或先将玻璃板侧边多余封胶材料去除）；

2.用刀在侧边胶处，沿着玻璃板和玻璃条的缝隙切开封胶材料（箭头处），轻轻打开玻璃板；

3.取胶时，需在凝胶和两侧玻璃条之间沿着玻璃条划一刀，防止取胶时发生粘连使凝胶破碎。

GLASS gel 中型预制胶兼容的电泳槽:

a.Life SureLock Tandem 中型胶电泳槽；

b.Life XCell4 SureLock 中型胶电泳槽；

c.Bio-Rad Criterion 电泳槽；

或其它胶板宽度在15厘米的电泳槽。

注意事项：

1. Bioss的 Tris-Gly预制胶使用的是中性的Tris-Gly缓冲系统。

2.如果需要蛋白条带更加清晰、平直，可降低电压至100-120V，适当延长电泳时间。

3.电压为180V电泳时，1块胶的电流在75mA左右，2块胶的电流在150mA左右，随时间增加电流逐步降低。

4.如要重复使用电泳缓冲液，建议每次更换内槽电泳缓冲液，外槽根据电泳实际情况更换。为了保证最佳电泳效果，不建议重复使用电泳缓冲液。

5.为达到更好的转膜效果，可以根据预制胶上残留的预染marker及膜上的预染marker确定转膜效率，并对转膜条件进行适当调整。目的蛋白的分子量，凝胶浓度及转膜液中的甲醇浓度等因素都会影响转膜效率。大蛋白尽量选择低浓度的胶。

6.如需分离<10 kDa的蛋白，建议使用Tricine体系预制胶。

7.如需分离>300 kDa的蛋白，建议使用Tris-Acetate体系预制胶。

8.仅限于专业人员的科学研究用，不得用于临床诊断或治疗，不得用于食品或药品，不得存放于普通住宅内。

9.为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。